Аминокислотное питание коров: влияние на воспроизводство и качество потомства
В предыдущей статье (Д. Глухов, 2018, Аминокислотное питание коров: влияние на здоровье животных) были рассмотрены функции этих аминокислот, затрагивающие различные аспекты здоровья животных: регуляция жирового и глюкозного обмена, защита от окислительного стресса, снижение интенсивности воспалительных процессов. И хотя здоровье коров наряду с молочной продуктивностью зачастую находятся под более пристальным вниманием собственников и управляющих молочных ферм, так как они напрямую влияют на прибыль, не стоит также забывать о показателях воспроизводства, поскольку именно они гарантируют рентабельность предприятия в долгосрочной перспективе.
Данные за последние десятилетия свидетельствуют о неутешительной тенденции снижения показателей воспроизводства по мере роста молочной продуктивности. Так, например, в период с 1970 по 2000 год межотёльный интервал в среднем увеличился с 13,5 до 14,7 месяцев, в индекс осеменения вырос с 1,8 до 3,0 (29).
Снижение уровня воспроизводства или яловость являются следствием множества причин. Наряду с некорректным управлением стадом, проблемами с обменом веществ, или внешними факторами (14, 42), неправильное кормление также существенно влияет на репродуктивные функции. Защищённые от распада в рубце метионин и лизин в некоторых случаях способны улучшить показатели воспроизводства как путём воздействия на эффективность использования азота корма, так и в качестве биологически активных веществ, стабилизирующих течение беременности и улучшающих качество потомства.
Влияние эффективности использования азота на воспроизводство
Для стимуляции и поддержания высокой молочной продуктивности, особенно в начале лактации, коровам зачастую скармливаются рационы с высоким содержанием сырого протеина (>17%), однако это может негативно сказываться на репродуктивной функции (8), так как аминокислоты, которые не были использованы в процессах синтеза белка, расщепляются до аммиака. Поскольку последний токсичен для организма, он обезвреживается путём преобразования в мочевину и выводится с мочой. Однако синтез мочевины – это энергозатратный процесс, соответственно скармливание избыточного количества белка приводит к дополнительным затратам энергии, которая могла бы быть использована, например, на восстановление организма после отёла. Кроме того, мочевина сама по себе может снижать репродуктивную функцию (21).
С этой точки зрения хорошими индикаторами эффективности кормления и воспроизводства являются такие показатели как концентрация азота мочевины в плазме крови (АМП) и в цельной крови (АМК). Эти показатели тесно связаны друг с другом и могут быть вычислены один из другого по следующей формуле:
АМП, мг/100 мл = (1.021 X АМК) + 0.399
Ещё одним хорошим индикатором эффективности белкового обмена в организме коров служит азот мочевины молока (АММ) (39). Данный показатель может использоваться для оценки правильности кормления в силу того, что он напрямую коррелирует с азотом мочевины крови (АМК), так как мочевина легко переходит из крови в другие ткани (31). Их взаимосвязь можно выразить следующей формулой:
АММ, мг/100 мл = (0.620 X АМК) + 4.75
Целевое значение концентрации АММ составляет 8-10 мг/100 мл (44), что соответствует 171-214 мг/л мочевины.
Отрицательное влияние повышенных концентраций азота мочевины в плазме, цельной крови и молоке на воспроизводство было доказано во множестве исследований. Melendez с соавторами в 2003 году обобщили часть этих данных, результат представлен в таблице 1.
Таблица 1— Влияние концентрации азота мочевины плазмы крови, цельной крови и молока (АМП, АМК и АММ соответственно) на показатели воспроизводства у молочных коров (32) |
|||
Показатель |
Критические концентрации, мг/100 мл |
Влияние на воспроизводство |
Источник |
АМК |
20 |
При АМК ≤20 мг/100 мл оплодотворяемость по первому осеменению составляла 50%, при концентрации мочевины в крови >20 мг/100 мл оплодотворяемость падала до 23% |
Ferguson et al., 1988 |
АМП* |
19,3±0,3 и 12,3±0,2 |
Концентрация АМП 19,3 ± 0,3 мг/100 мл выражалась в 31% оплодотворяемости по первому осеменению, что достоверно ниже (P <0,05), чем при концентрации 12,3 ± 0,2 мг/100 мл – 48% |
Canfield et al., 1990 |
АМП* |
17,5±0,22 и 23,6±0,23 |
Концентрация АМП 23,6 ± 0,23 г/100 мл выражалась в 61%, оплодотворяемости по первому осеменению, что достоверно ниже (P <0.05), чем при концентрации 17.5 ± 0.22 мг/100 мл – 82% |
Elrod & Butler, 1993 |
АМП |
>20 |
Снижение оплодотворяемости наблюдалось при АМП свыше 20 mg/dL; снижение происходило в соотношении 0,8% на каждый миллиграмм азота мочевины |
Butler, 2000 |
АМП и АММ |
>19 каждый |
Повышение концентраций АМП и АММ выражалось в достоверном (P = 0,02) снижении оплодотворяемости (18 и 21% в двух экспериментах) |
Butler et al., 1996 |
АМК* |
16.4±0,02 и 21.3±0,05 |
Концентрация АМК 21,3 ± 0,05 мг/100 мл выражалась в 41,3% оплодотворяемости на 120 день после отёла, в то время как при концентрации 16,4 ± 0,02 мг/100 мл оплодотворяемость в этот же период была 70.1% |
Burke et al., 1997 |
АММ* |
21,5±0,7 и 23,3±0,4 |
Животные с высокой концентрацией АММ чаще приходили в охоту через 21 день после осеменения |
Larson et al., 1997 |
АММ* |
>16 |
Количество удачных оплодотворений при первом осеменении было ниже у коров с высокой концентрацией АММ; во Флориде животные с низким уровнем АММ оплодотворялись в среднем в 18 раз лучше |
Melendez et al., 2000 |
АММ* |
>15,4 |
У животных с концентрацией АММ <10,0 и 10-12,7 мг/100 мл подтверждение стельности происходило соответственно в 2,4 и 1,4 раза чаще, чем у коров с АММ >15,4 мг/100 мл |
Rajala-Schultz et al., 2001 |
*Указанные значения являются средними ±стандартное отклонение. |
Снижение оплодотворяемости может происходить из-за того, что высокие концентрации азота мочевины в плазме крови влияют на pH среды в матке (15, 16, 38) и концентрацию мочевины, магния, калия фосфора и цинка (26). Слишком сильные изменения среды внутри матки, особенно на ранних этапах развития эмбриона, могут существенно повлиять на его выживаемость. Помимо этого, высокий уровень АМП может влиять и на качество эмбрионов. Например, в исследовании, проведённом на 180 лактирующих коровах, простимулированных на суперовуляцию (лекарственная или гормональная стимуляция на одновременную выработку большого количества фолликулов, один из этапов технологии трансплантации эмбрионов), было выявлено, что от животных с уровнем азота мочевины в молоке от 12 до 18 мг/100 мл было получено большее число пригодных к трансплантации эмбрионов, чем от животных с концентрацией АММ выше 18 мг/100 мл (7,4 ± 0,6 против 4,6 ± 0,6; P < 0,05) (28). Также было установлено, что повышенные уровни азота мочевины в плазме крови снижали жизнеспособность эмбрионов овец и тормозили их развитие и in vivo, и in vitro (4, 30).
Введение в рационы жвачных лимитирующих аминокислот, метионина и лизина, может существенно улучшить эффективность использования азота, что не только положительно повлияет на продуктивность, но и снизит концентрации азота мочевины в плазме крови и, соответственно, в молоке (Таблица 2).
Таблица 2— Влияние изопропилового эфира 2-гидрокси-4-(метилтио) бутановой кислоты (HMBi) на молочную продуктивность и концентрации азота мочевины в плазме крови и молоке (АМП и АММ соответственно) (43) |
|||
|
Рацион |
||
|
16.5 % СП |
16.5 % СП + МетаСмарт |
|
Молочная продуктивность, кг/день |
39,8a |
42,3a |
|
Выход белка, кг/день |
1,12a |
1,23a |
|
Выход жира, кг/день |
1,44a |
1,65b |
|
АММ, мг/100 мл |
12,6a |
12,0b |
|
АМП, мг/100 мл |
15,4a |
14,5b |
|
Конверсия корма1 |
1,79a |
1,78a |
|
Конверсия азота2 |
29,8a |
32,5b |
|
abРазные буквенные индексы указывают на достоверные различия P <0,05 СП – сырой протеин 1 Конверсия корма = молочная продуктивность, кг / количество потреблённого сухого вещества, кг 2 Конверсия азота = азот молока / потреблённый азот |
Более того, введение сразу обеих лимитирующих аминокислот в правильном соотношении может повлиять на снижение АМП м АММ сильнее, чем использования каждой из них по отдельности. Так, например, эксперимент Wang и соавторов (2010) показал, что одновременное введение метионина и лизина в рацион, содержащий 16,5% сырого протеина, оказывало больший эффект на молочную продуктивность и концентрации азота мочевины в плазме крови и молоке, чем введение одного метионина (Таблица 3).
Таблица 3— Влияние введения в рацион метионина и лизина на молочную продуктивность, эффективность использования азота и концентрации азота мочевины в плазме крови и молоке (45) |
||||
|
Рацион |
|||
|
Контроль |
Метионин |
Метионин+лизин |
|
Обменный метионин, г/день |
38 |
48 |
48 |
|
Обменный лизин, г/день |
122b |
122b |
144a |
|
Соотношение лизин:метионин |
3,10:1b |
2,58:1c |
3,04:1b |
|
Молочная продуктивность, кг/день |
26,5b |
28,5a |
30,3a |
|
МСЭ1, кг/день |
25,7b |
28,3a |
28,5a |
|
Выход белка, кг/день |
0,87b |
0,92a |
0,98a |
|
Азот мочевины в плазме крови, мг/100 мл |
14,8b |
13,6b |
13,0c |
|
Азот мочевины в молоке, мг/100 мл |
14,4a |
13,4b |
12,8c |
|
Конверсия азота2 |
0,260b |
0,283b |
0,300a |
|
abcРазные буквенные индексы указывают на достоверные различия P <0,05 1Молоко, скорректированное по энергии (4,0 % жира и 3,4 % белка) 2 Конверсия азота = азот молока / потреблённый азот |
Введение защищённых аминокислот позволяет также снизить количество сырого протеина в рационе без потери молочной продуктивности, что повлечёт ещё более существенное снижение концентрации азота мочевины в крови и молоке (Таблица 4).
Таблица 4— Влияние включения в рацион защищённого метионина (ЗМ) наряду со снижением количества сырого протеина (СП) на молочную продуктивность и концентрации азота мочевины в плазме крови и молоке (АМП и АММ соответственно) (33) |
|||
|
Рацион |
||
|
18.3 % СП |
17.0 % СП + ЗМ |
|
Молочная продуктивность, кг/день |
46.2a |
46.6a |
|
Выход белка, кг/день |
1.38 |
1.44 |
|
Выход жира, кг/день |
1.67 |
1.71 |
|
АММ, мг/100 мл |
17.3a |
13.5b |
|
АМП, мг/100 мл |
20.6a |
17.8b |
|
Конверсия азота1 |
31.1a |
35.0b |
|
abРазные буквенные индексы указывают на достоверные различия P <0,05 1 Конверсия азота = азот молока / потреблённый азот |
Исходя из всего вышесказанного можно предположить, что балансирование рационов по аминокислотам может положительно повлиять на воспроизводство как минимум за счёт снижения концентрации азота мочевины в крови и, как следствие, во внутриматочной среде.
Влияние отдельных аминокислот на воспроизводство
Как уже упоминалось выше, аминокислоты могут оказывать положительное влияние на физиологические процессы независимо от их участия в синтезе белков. Это можно назвать «функциональными эффектами» аминокислот. Наиболее изученными с точки зрения влияния на воспроизводство «функциональными аминокислотами» являются метионин и аргинин (36, 47).
Для того, чтобы оценить насколько велико значение аминокислот в процессе размножения, давайте для начала кратко рассмотрим, что происходит на начальных этапах развития эмбриона.
Итак, оплодотворение яйцеклетки и первые стадии развития зародыша, называемые дроблением, происходят в яйцеводе. Первоначально питание эмбиона происходит лишь за счет запасов желтка, накопленных в яйцеклетке, но уже на поздних стадиях дробления зародыш начинает использовать питательные вещества, получаемые из содержимого секрета, выделенного железистыми клетками яйцевода и матки. Примерно к 6-7 дню после овуляции эмбрион развивается до стадии бластоцисты и достигает рога матки. Примерно на 9 день зародыш сбрасывает блестящую оболочку и где-то на 17 день прикрепляется к стенке матки. На 25-28 сутки становится возможным питание эмбриона через формирующуюся плаценту. Всё время до этого зародыш питается за счёт желтка и выделений маточных желёз, т.е. его жизнеспособность и степень обеспеченности необходимыми для развития питательными веществами, в том числе аминокислотами, во многом зависят от внутренней среды матки. Таким образом очень важно понимать, как могут изменяться концентрации тех или иных веществ, в частности аминокислот, в матке в процессе развития эмбриона (11).
Hugentobler и соавторы (2007) обобщили данные по концентрации аминокислот в плазме крови (измерение на 0, 2, 3, 4 и 6 день эстрального цикла), в яйцеводах и матке (измерение на 6, 8 и 14 день эстрального цикла) гибридных нетелей мясного направления. Изменений концентрации аминокислот в зависимости от стадии эстрального цикла не наблюдалось. Однако концентрации 9 из 20 аминокислот в яйцеводах были существенно выше, чем в плазме крови, что свидетельствует о в клетках яйцеводов наличии механизмов, позволяющих увеличивать концентрацию аминокислот в своих выделениях для обеспечения ими зародыша. В матке также наблюдались повышенные концентрации многих аминокислот по сравнению с плазмой крови. Наибольшей концентрации в яйцеводах и матке достигали аспарагиновая кислота, аспарагин и глутаминовая кислота.
Помимо способности постоянно поддерживать более высокою по сравнению с кровью концентрацию аминокислот, клетки яйцеводов и матки могут дополнительно увеличивать концентрации некоторых аминокислот в своих выделениях в период активного роста эмбриона (так называемая элонгация, происходит на 14-18 день). Было проведено три исследования по определению концентраций аминокислот яйцеводах и матке в этот период, два на овцах (18) и одно на коровах (20). Исследования Gao и соавторов (2009) дополнительно подтвердили, что у небеременных животных на 10-16 день цикла концентрации аминокислот в секрете железистых клеток матки не изменялись, тогда как у суягных овец концентрации отдельных аминокислот возрастали 3-23 раза.
Wiltbank и соавторы (2014) суммировали данные описанных выше исследований (18, 20, 22), чтобы наглядно проиллюстрировать существенные различия концентраций аминокислот в плазме крови, яйцеводах и матке, а также их многократное возрастание в период активного роста эмбриона. Полученные результаты, позволяющие получить представление об изменениях количества аминокислот в матке на ранних стадиях беременности, представлены в таблице 5.
Таблица 5 – Концентрации 19 аминокислот в плазме крови, яйцеводах и матки, на основе данных Hugentobler и соавторов, 2007. Последняя колонка иллюстрирует кратность изменения концентраций аминокислот в матке при наступлении беременности на 15 день у овец (18) и на 18 день у коров (20). |
||||||
Аминокислота |
Микромолярная концентрация, μM (10-6моль/л) |
Яйцевод / плазма |
Матка / плазма |
Кратность увеличения при беременности |
||
Яйцевод |
Плазма |
Матка |
||||
Аланин |
592,2 |
252,52 |
353,07 |
235% |
156% |
2,87X |
Аргинин |
133,3 |
94,50 |
193,87 |
141% |
196% |
7,58X |
Аспарагин |
41,0 |
19,60 |
72,17 |
209% |
357% |
5,50X |
Аспарагиновая кислота |
135,5 |
6,72 |
120,80 |
2016% |
2059% |
4,93X |
Глутамин |
194,7 |
236,80 |
208,57 |
82% |
89% |
4,06X |
Глутаминовая кислота |
346,3 |
62,12 |
217,63 |
558% |
341% |
3,45X |
Глицин |
1557,6 |
680,88 |
1215,73 |
229% |
183% |
1,24X |
Гистидин |
68,8 |
57,04 |
109,23 |
121% |
195% |
11,48X |
Изолейцин |
87,6 |
86,10 |
94,10 |
102% |
103% |
7,06X |
Лейцин |
192,2 |
154,72 |
201,03 |
124% |
121% |
4,41X |
Лизин |
223,7 |
105,34 |
209,23 |
212% |
176% |
14,39X |
Метионин |
39,8 |
24,88 |
40,40 |
160% |
201% |
12,39X |
Фенилаланин |
68,1 |
38,42 |
75,50 |
177% |
175% |
7,31X |
Серин |
172,7 |
85,54 |
252,73 |
202% |
301% |
2,52X |
Таурин |
49,4 |
47,34 |
440,03 |
104% |
783% |
1,09X |
Треонин |
162,6 |
133,60 |
144,60 |
122% |
96% |
3,29X |
Триптофан |
36,1 |
27,52 |
38,40 |
131% |
134% |
4,99X |
Тирозин |
54,4 |
25,62 |
63,73 |
212% |
227% |
5,30X |
Валин |
181,4 |
170,04 |
192,47 |
107% |
106% |
4,63X |
Интересно то, что при беременности в матке сильнее всего возрастала концентрация тех аминокислот, которые признаны лимитирующими молочную продуктивность у жвачных, то есть метионина, лизина и гистидина (более чем десятикратное увеличение во всех трёх исследованиях). Соответственно можно предположить, что недостаточное поступление в организм матери этих аминокислот в период, как минимум, элонгации эмбриона, может негативно сказаться на темпах его роста или развитии плаценты (46).
Как уже упоминалось выше, наиболее изученными аминокислотами с точки зрения воздействия на воспроизводство у животных являются аргинин и метионин. При этом исследований на жвачных в этой области достаточно мало. На сегодняшний день относительно большой объём данных о влиянии на репродуктивную функцию и развитие эмбриона у коров есть только для метионина.
Здесь стоит упомянуть один из наиболее ранних, но достаточно интересных опытов, проведённых Coelho и соавторами в 1989 году. Исследователи использовали сыворотку крови лактирующих коров для выращивания крысиных эмбрионов на стадии органогенеза (9,5 дней после зачатия), которые нормально развиваются в плазме крови крыс без необходимости введения каких-либо дополнительных питательных веществ. В силу этого их часто используют для определения потребностей зародыша в конкретных веществах в процессе развития или выявления токсичных для эмбрионов веществ в крови животных разных видов (13). В ходе эксперимента выяснилось, что при помещении эмбрионов в чистую сыворотку коровьей крови, их развитие происходило с нарушениями (недозакрытие нервной трубки, не развивались глаза и жаберные дуги развивались эмбрионы неправильной формы). При добавлении в сыворотку комплекса аминокислот и витаминов развитие шло нормально. Введение только аминокислот без витаминов также позволяло зародышам развиваться без патологий. Использование комплекса аминокислот без метионина снова привело к появлению нарушений, а вот введение только метионина снова нормализовало развитие эмбрионов. После этого было решено провести дополнительный эксперимент, в ходе которого для выращивания зародышей была использована сыворотка крови коров, дополнительно получавших защищённый метионин (110 г/день). В ней развитие эмбрионов также шло без патологий. Одним из выводов исследования было предположение о том, что концентрация метионина в крови коров столь низкая, что его не хватает даже для обеспечения потребностей крысиных зародышей, а правильное развитие собственных эмбрионов происходит, вероятно, только при наличии механизмов, позволяющих накапливать необходимые питательные вещества.
Ещё один интересный эксперимент по установлению необходимости метионина для нормального развития эмбрионов коров проводилось Ikeda и соавторами в 2012 году. Исследователи вводили в эмбриональные культуры КРС дополнительный метионин, либо этионин. Последний является антагонистом метионина и блокирует его метаболизм в тканях. Этионин не влиял на развитие зародышей в стадии морулы (3-5 день развития), но практически полностью блокировал развитие морулы в бластоцисту (Контроль = 38,5%, Этионин = 1,5%). Соответственно метионин играет важную роль уже на столь ранней стадии эмбриогенеза – без него зародыш просто не будет развиваться дальше.
Однако метионин может отвечать не только за нормальное развитие эмбриона, но и за накопление питательных веществ, необходимых для поддержания жизни развивающегося организма. Недавнее исследование Acosta и соавторов (2016) показало, что введение в рацион молочных коров защищённого метионина на последних стадиях развития фолликула и ранних этапах развития эмбрионов (до 7 дня) приводило к накоплению большего количества жира в зародышах. Таким образом, метионин влияет на выживаемость эмбриона, как минимум до момента сброса блестящей оболочки, пока он питается за счёт запасов желтка, а возможно и до момента его прикрепления к стенке матки и развития плаценты, поскольку именно накопленный жир будет являться одним из основных источников энергии для зародыша. Подтверждением этому может служить более низкий уровень ранней эмбриональной смертности у коров второй и более лактации, дополнительно получавших защищённый метионин (11).
На ближнем востоке также были получены данные, подтверждающие положительное влияние защищённого метионина на показатели воспроизводства. Ardalan и соавторы (2010) отметили существенное снижение сервис-периода и индекса осеменения (p < 0,05) у коров голштинской породы, получавших 18 г защищённого от распада в рубце метионина в день в течение 4 недель до и 20 недель после отёла (Таблица 6). Также была отмечена тенденция к уменьшению дней до первой охоты. Интересно, что введение 60 г защищённого холина в дополнение к метионину оказывало существенно больший эффект на воспроизводство (Таблица 6).
Таблица 6 — Влияние защищённого метионина (ЗМ) и защищённого холина на показатели воспроизводства у коров голштинской породы (3) |
||||
|
Рацион |
|||
|
Контроль |
ЗМ |
ЗМ + ЗХ |
|
Дней до первой охоты |
61,8 |
48,8 |
31,6 |
|
Сервис-период, дней |
115,4a |
88,6ab |
73,8b |
|
Индекс осеменения |
3b |
2,2ab |
2a |
|
abРазные буквенные индексы указывают на достоверные различия P <0,05 |
Nikkhah и соавторы (2013) также оценивали влияние защищённого метионина на воспроизводство. У коров, получавших метионин, наблюдалось уменьшение количества дней до первой охоты, снижение индекса осеменения, уменьшение сервис-периода и межотёльного интервала (Таблица 7).
Таблица 7 — Влияние защищённого метионина (ЗМ) на показатели воспроизводства у коров голштинской породы в Иране в летний период (34). |
|||
|
Контроль |
ЗМ |
Достоверность |
Дней до первой охоты |
52,7 |
30,0 |
<0,01 |
Дней до первого осеменения |
78,0 |
50,5 |
0,01 |
Индекс осеменения |
3,1 |
2,8 |
0,69 |
Сервис-период, дней |
142,7 |
106,2 |
0,04 |
Межотёльный интервал, дней |
421,3 |
386,8 |
0,06 |
Очевидность охоты1 |
2,61 |
1,96 |
0,09 |
1Оценка очевидности охоты: 1 – рефлекс неподвижности чётко выражен, 2 – рефлекс неподвижности не выражен, 3 – рефлекс неподвижности не наблюдается |
Улучшение качества потомства: эпигенетические эффекты метионина
Прежде чем рассмотреть эту тему необходимо кратко пояснить, что же такое эпигенетика. Она представляет собой изучение закономерностей эпигенетического наследования – изменения экспрессии генов или фенотипа клетки, вызванных механизмами, не затрагивающими последовательности ДНК. Проще говоря, это раздел генетики, изучающий факторы и механизмы, отвечающие за «включение» и «выключение» определённых генов на определённых этапах развития организма. Наиболее изученным к настоящему моменту эпигенетическим механизмом является метилирование ДНК, в котором метионин играет ключевую роль. Таким образом обеспечение необходимого уровня метионина в организме животных на определённой стадии беременности может благоприятно повлиять н только на её течение, но и улучшить физиологические показатели потомства. Например, в опыте, проведённом Sinclair и соавторами (2007), овцам до осеменения и в течение 6 дней после него скармливался рацион, не удовлетворяющий потребности в метионине. Затем полученные от этих животных эмбрионы, чьё развитие было оценено как нормальное, трансплантировались контрольными животным, не испытывавшим недостатка в метионине. После окота проводилась оценка ягнят. Животные, полученные от матерей, испытывавших недостаток в метионине, имели существенные отличия в кровяном давлении и иммунной функции. Penagaricano и соавторы (2013) провели схожее исследование на коровах. Они проверяли эмбрионы, полученные от коров, получавших и не получавших метионин с рационом, на различия в экспрессии генов (реализации генетического материала). Оценивались только эмбрионы высшего качества, полученные от определённых коров, использовались методы, позволяющие отследить экспрессию любых генов. Примечательно, что даже небольшая разница в концентрации метионина в крови приводила к существенным различиям в экспрессии генов в эмбрионах. Всего было происследовано 10662 гена от коров обеих групп. Статистически достоверные различия были обнаружены в экспрессии 276 генов. В частности, в контрольной группе наблюдалась более сильная экспрессия 200 генов, в опытной – 76 генов, то есть большая часть этих генов была «выключена» у животных, дополнительно получавших метионин. Вполне возможно, что подавление экспрессии этих генов происходит целенаправленно до достижения определённого этапа развития, поскольку многие из них вовлечены в регуляцию иммунной функции или отвечают за развитие на более поздних стадиях и их преждевременное «включение» может быть критичным как для дальнейшего протекания беременности так и для нормальной работы иммунной системы телёнка после рождения.
Таким образом, обеспечение потребностей коров в метионине может повлиять на экспрессию генов развивающегося эмбриона, что в свою очередь может положительно сказаться на течении беременности и качестве потомства. Это подтверждают результаты совсем недавнего исследования, которые были опубликованы осенью 2018 года (2). В данном опыте сравнивали телят, полученных от двух групп коров третьей лактации, которым в течение сухостойного периода скармливали одинаковые по составу кормов и питательности рационы. Рацион раннего сухостоя (45-29 день до отёла) содержал 5,57 МДж чистой энергии лактации (ЧЭЛ) и 13,9% сырого протеина (СП), позднего сухостоя (28 дней до отёла) – 6,16 МДж ЧЭЛ и 15,3% СП. Различие заключалось лишь в том, что в рацион опытной группы в течение последних 28 дней стельности был дополнительно включён защищённый метионин, с тем расчётом, чтобы соотношение обменного метионина к обменному лизину составляло 2,81:1. При рождении телят взвешивали, а также измеряли длину тела, высоту в холке, высоту крестца, ширину зада в маклоках. Всем новорожденным животным выпаивали молозиво по одной и той же схеме и далее все телята получали одинаковый по составу заменитель молока и стартерный комбикорм. Схемы выпойки и кормления, а также условия содержания для всех животных были одинаковыми. В течение первых 56 дней жизни телят ежедневно фиксировали потребление ими комбикорма и еженедельно оценивали темпы роста по следующим показателям: живая масса, высота в холке, высота крестца, ширина зада в маклоках. Помимо этого, также оценивали консистенцию кала.
Уже при оценке телят сразу после рождения были выявлены достоверные различия по ряду показателей. В частности, телята, рождённые от коров, получавших защищённый метионин, имели бо́льшую живую массу, высоту в холке и крестце. В дальнейшем основные отличия были отмечены по следующим параметрам: среднесуточный привес, высота в холке и высота крестца. Кроме того, у потомства животных, получавших метионин, была отмечена тенденция к увеличению потребления стартерного комбикорма и лучшей консистенции кала, то есть телята, полученные от коров опытной группы не только были изначально крупнее, но и быстрее росли и развивались в первые, наиболее важные, 8 недель жизни, а также, вероятно, имели меньше проблем с пищеварением или были более устойчивы к бактериальным инфекциям. Обобщённые результаты опыта представлены в таблице 8.
Таблица 8 — Влияние включения защищённого метионина (ЗМ) в рационы коров голштинской породы за 28 дней до отёла на параметры роста и развития телят (2). |
|||
Параметр |
Контроль |
ЗМ |
Достоверность |
Оценка сразу после рождения |
|||
Живая масса, кг |
42,1b |
44,1a |
0,04 |
Высота крестца, см |
79,6b |
81,3a |
0,02 |
Ширина в маклоках, см |
16,3 |
16,5 |
0,74 |
Высота в холке, см |
75,9b |
77,8a |
<0,01 |
Длина тела, см |
110 |
112 |
0,38 |
Оценка в течение первых 56 дней жизни |
|||
Среднесуточный привес, кг |
0,67b |
0,72a |
0,03 |
Высота крестца (в конце периода), см |
86,8b |
88,8a |
<0,01 |
Ширина в маклоках (в конце периода), см |
20,3 |
20,6 |
0,26 |
Высота в холке (в конце периода), см |
82,7b |
84,5a |
<0,01 |
Длина тела (в конце периода), см |
126 |
128 |
0,17 |
Среднесуточное потребление стартера, кг |
0,79 |
0,85 |
0,19 |
Консистенция кала, балл1 |
1,83 |
1,71 |
0,09 |
abРазные буквенные индексы указывают на достоверные различия P <0,05 1Визуальная оценка по четырёх балльной шкале: 1 – нормально оформленный, 2 – кашеобразный, 3 – жидкий, 4 – водянистый. |
Исходя из этих данных можно сделать вывод, что скармливание коровам защищённого метионина даже в течение достаточно короткого периода перед отёлом, последних четырёх недель стельности, способно положительно повлиять на темпы роста и развития, а также, вероятно, на иммунную функцию телят в наиболее важный период – в первые 2 месяца жизни, когда идёт активное развитие всех органов, включая молочную железу (5).
Заключение
Воспроизводство – это важный аспект, который обеспечит рентабельность молочной фермы в течение долгого времени. Для поддержания высоких показателей воспроизводства необходимо, помимо грамотного управления стадом и работы с генетикой, правильно составлять рационы и отслеживать их эффективность. Это особенно важно в самом начале лактации, когда организм коровы подготавливается к следующему репродуктивному циклу. Особое внимание в этот период должно уделяться контролю концентрации мочевины в молоке, поскольку этот показатель напрямую связан с концентрацией мочевины в крови, а её высокий уровень может существенно ухудшить оплодотворяемость. У животных, получающих правильно составленный рацион, уровень мочевины в молоке должен быть на уровне 170-215 мг. При этом наиболее информативным будет определение мочевины в сборной пробе молока, полученной путём отбора и смешивания проб с каждой дойки в течение дня.
Помимо балансирования по протеину, энергии, витаминам, макро- и микроэлементам, рационы также должны оцениваться по содержанию лимитирующих аминокислот, поскольку последние, будучи многофункциональными веществами, оказывают положительное влияние не только на молочную продуктивность и содержание жира и белка в молоке (12, 19, 23, 35, 41) за счёт повышения эффективности использования азота, но и на ряд важных физиологических процессов в организме коровы как биологически активные вещества и их предшественники. Таким образом, скармливание рационов с невысоким уровнем сырого протеина (≤17% на 1 кг сухого вещества) с введением необходимого количества метионина и лизина в правильном соотношении будет наилучшим решением в начале лактации.
Список литературы предоставляется по отдельному запросу.
Контакты:
Тел: +7-916-863-42-48
E-mail: Dmitry.Glukhov@kemin.com
© Кемин Индастриз Инк. и ее группа компаний 2019